Separation of Taxol from Taxanes by NP-HPLC

정상 액체 크로마토그래피를 이용한 taxane으로부터 taxol의 분리

  • Received : 1996.12.09
  • Accepted : 1997.02.25
  • Published : 1997.04.10

Abstract

Taxol which is recognized as a powerful anticancer reagent was extracted from yew extract and separated by NP-HPLC (Normal-PhaseHigh Performance Liquid Chromatography). The experiments were performed in the isocratic mode with $5{\mu}l$ to $100{\mu}l$ injection volume and 1ml/min mobile phase flow rate. The major mobile phase was hexane and small amounts of ethanol, methanol, 1-propanol and isopropanol were added to change the retention behavior. Prior to a real sample, the artificial mixture of taxol, cephalomannine and 10-deacetyltaxol was tested. They are hard to be separated because of similar chemical structures. The experimental results showed that the proper composition of mobile phase for separating the three components was found 96% hexane and 4% ethanol(vol.%) or 96% hexane, 2% 1-propanol and 2% methanol(vol.%). Compared to the run time of 80 minutes for the binary system, the mixture was separated within 50 minutes with the less amount of mobile phase for the ternary system. Finally, $1{\mu}g$ of taxol was separated from yew tree extracts under the optimum operating conditions.

항암제로 탁월한 효능이 있는 taxol을 정상 액체 크로마토그래피를 이용하여 주목나무의 추출물에서 분리하였다. Taxol을 분리하기 위해 시료 주입량은 $5{\mu}l$에서 $100{\mu}l$로 변화시키고, 이동상 유속은 1ml/min로 고정하여 일정 용매법으로 실험을 하였다. 실험에 사용된 이동상은 헥산, 에탄올, 메탄올, 1-프로판올, 이소프로판올이었다. Taxol과 유사한 성질를 갖는 표준시료 cephalomannine, taxol, 10-deacetyltaxol의 혼합물에서 taxol을 분리하였다. Cephalomannine, taxol, 10-deacetyltaxol 혼합물의 분리 실험 결과로 taxol의 분리 최적 조건은 2성분계에서 헥산/에탄올의 부피 조성비가 96/4이며, 3성분계에서는 헥산/1-프로판올/메탄올의 부피 조성비가 96/2/2이었다. 분리시간은 2성분계에서 80분인데 비해 3성분계에서는 50분으로 적은 용매를 사용하여 분리할 수 있었다. 위에서 얻는 실험조건으로 실제 주목나무의 추출물 $1{\mu}g$에서 taxol를 분리할 수 있었다.

Keywords

Acknowledgement

Grant : 제조용액체 크로마토그래피를 이용한 Taxol 분리공정의 개발

Supported by : 교육부

References

  1. J. Am. Chem. Soc. v.93 M. C. Wani;H. L. Taylor;M. E. Wall;P. Coggon;A. T. McPhail
  2. J. Chromatogr B. v.664 M. T. Huizing;H. Rosing;F. Koopman;A. C. F. Keung;J. H. Beijen
  3. Burger's Medicinal Chemistry and Drug Distory (5th ed.) Manfred E. Wolff
  4. J. Chromatogr B. v.664 S. D. Harvey;J. A. Campbell;R. G. Kelsey;N. C. Vance
  5. J. Liq. Chromatogr. v.16 Raymond E. B. Ketchum;Donna M. Gibson
  6. J. Liq. Chromatogr. v.12 K. M. Witherup;S. A. Look;H. W. Stasko;T. G. Mccloud;H. J. Muschik
  7. J. Nat. Prod. v.56 no.4 Giovanni Appendino;Silvia Tagliapietta;Hasan C. Ozen;Pieluigi Gariboldi;Bruno Gabetta;Ezio Bombardelli
  8. J. Liq. Chromatogr. v.18 Raymond E. B. Ketchum;Donna M. Gibson
  9. J. Liq. Chromatogr. v.16 T. P. Castor;T. A. Tyler
  10. J. Chromatogr. A. v.702 D. R. Wu;K. Lohse;H. C. Greenblatt
  11. J. Liq. Chromatogr. v.14 J. H. Cardellina II
  12. Introduction to high performance liquid chromatography (2nd Ed.) R. J. Hamilton;P. A. Sewell
  13. J. Liq. Chromatogr. v.17 W. J. Kopycki;H. N. Elsohly;J. D. McChesney