Ca2+ signaling of endothelial cells plays a critical role in controlling blood flow and pressure in small arteries and arterioles. As the impairment of endothelial function is closely associated with cardiovascular diseases (e.g., atherosclerosis, stroke, and hypertension), endothelial Ca2+ signaling mechanisms have received substantial attention. Increases in endothelial intracellular Ca2+ concentrations promote the synthesis and release of endothelial-derived hyperpolarizing factors (EDHFs, e.g., nitric oxide, prostacyclin, or K+ efflux) or directly result in endothelial-dependent hyperpolarization (EDH). These physiological alterations modulate vascular contractility and cause marked vasodilation in resistance arteries. Transient receptor potential (TRP) channels are nonselective cation channels that are present in the endothelium, vascular smooth muscle cells, or perivascular/sensory nerves. TRP channels are activated by diverse stimuli and are considered key biological apparatuses for the Ca2+ influx-dependent regulation of vasomotor reactivity in resistance arteries. Ca2+-permeable TRP channels, which are primarily found at spatially restricted microdomains in endothelial cells (e.g., myoendothelial projections), have a large unitary or binary conductance and contribute to EDHFs or EDH-induced vasodilation in concert with the activation of intermediate/small conductance Ca2+-sensitive K+ channels. It is likely that endothelial TRP channel dysfunction is related to the dysregulation of endothelial Ca2+ signaling and in turn gives rise to vascular-related diseases such as hypertension. Thus, investigations on the role of Ca2+ dynamics via TRP channels in endothelial cells are required to further comprehend how vascular tone or perfusion pressure are regulated in normal and pathophysiological conditions.
The present study was undertaken to determine whether treatment with genistein, the plant-derived estrogen-like compound influences agonist-induced vascular smooth muscle contraction and, if so, to investigate related mechanisms. The measurement of isometric contractions using a computerized data acquisition system was combined with molecular experiments. Genistein completely inhibited KCl-, phorbol ester-, phenylephrine-, fluoride- and thromboxane $A_2$-induced contractions. An inactive analogue, daidzein, completely inhibited only fluoride-induced contraction regardless of endothelial function, suggesting some difference between the mechanisms of RhoA/Rho-kinase activators such as fluoride and thromboxane $A_2$. Furthermore, genistein and daidzein each significantly decreased phosphorylation of MYPT1 at Thr855 had been induced by a thromboxane $A_2$ mimetic. Interestingly, iberiotoxin, a blocker of large-conductance calcium-activated potassium channels, did not inhibit the relaxation response to genistein or daidzein in denuded aortic rings precontracted with fluoride. In conclusion, genistein or daidzein elicit similar relaxing responses in fluoride-induced contractions, regardless of tyrosine kinase inhibition or endothelial function, and the relaxation caused by genistein or daidzein was not antagonized by large conductance $K_{Ca}$-channel inhibitors in the denuded muscle. This suggests that the RhoA/Rho-kinase pathway rather than $K^+$- channels are involved in the genistein-induced vasodilation. In addition, based on molecular and physiological results, only one vasoconstrictor fluoride seems to be a full RhoA/Rho-kinase activator; the others are partial activators.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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2002.06b
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pp.35-35
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2002
The large conductance $Ca^{2+}$ -activated $K^{+}$ channels ($BK_{Ca}$) in vascular smooth muscle have been considered to function as a negative feedback in pressure-induced vasoconstriction. In the present study, the function of cytoskeletons in the regulation of $BK_{Ca}$ and its stretch sensitivity was investigated. Using the inside-out patch clamp technique, we recorded single channel activities of $BK_{Ca}$ with 150 mM KCl in the bath solution (pCa=6.5).(omitted)itted)
Single smooth muscle cells of the rabbit pulmonary artery were isolated by treatment with collagenase and elastase. Using the patch clamp technique, potassium channel activity was recorded from the inside-out membrane patch. The channel had a sin히e channel conductance of about 360 pS in symmetrical concentration of K on both sides of the patch, 150 mM, and had a linear current-voltage relationship. During the application of 10 mM tetraethylammonium (TEA) to the intracellular membrane surface, the amplitude of single channel current was reduced and very rapid flickering appeared. The open probability $(P_0)$ of this channel was increased by increasing positivity of the potential across the patch membrane, with e-fold increase by 20 mV depolarization, and by increasing the internal $Ca^{2+}$ concentration. These findings are consistent with those of large conductance Ca-activated K channels reported in other tissues. But the shortening of the mean open time by increasing $[Ca^{2+}]_i$, was an unexpected result and one additional closed state which might be arisen from a block of the open channel by Ca binding was suggested. The $P_0-membrane$ potential relationship was modulated by internal pH. Decreasing pH reduced $P_0$. Increasing pH not only increased $P_0$ but also weakened the voltage dependency of the channel opening. The modulation of Ca-activated K channel by pH was thought to be related to the mechanism of regulation of vascular tone by the pH change.
Ion channel inhibitors are widely used for pharmacological discrimination between the different channel types as well as for determination of their functional role. In the present study, we tested the hypothesis that 4-aminopyridine (4-AP) could affect the large conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel ($BK_{Ca}$) currents using perforated-patch or cell-attached configuration of patch-clamp technique in the rabbit pulmonary arterial smooth muscle. Application of 4-AP reversibly inhibited the spontaneous transient outward currents (STOCs). The reversal potential and the sensitivity to charybdotoxin indicated that the STOCs were due to the activation of $BK_{Ca}$. The $BK_{Ca}$ currents were recorded in single channel resolution under the cell-attached mode of patch-clamp technique for minimal perturbation of intracellular environment. Application of 4-AP also inhibited the single $BK_{Ca}$ currents reversibly and dose-dependently. The membrane potential of rabbit pulmonary arterial smooth muscle cells showed spontaneous transient hyperpolarizations (STHPs), presumably due to the STOC activities, which was also inhibited by 4-AP. These results suggest that 4-AP can inhibit $BK_{Ca}$ currentsin the intact rabbit vascular smooth muscle. The use of 4-AP as a selective voltage-dependent $K^+$ (KV) channel blocker in vascular smooth muscle, therefore, must be reevaluated.
Objective : Papaverine has been used in treating vasospasm following subarachnoid hemorrhage[SAH]. However, its action mechanism for cerebral vascular relaxation is not clear. Potassium channels are closely related to the contraction and relaxation of cerebral smooth muscle. Therefore, to identify the role of potassium and calcium channels in papaverine-induced vascular relaxation, we examine the effect of papaverine on potassium channels in freshly isolated smooth muscle cells from rat basilar artery. Methods : The isolation of rat basilar smooth muscle cells was performed by special techniques. The whole cell currents were recorded by whole cell patch clamp technique in freshly isolated smooth muscle cells from rat basilar artery. Papaverine was added to the bath solution. Results : Papaverine of $100{\mu}M$ into bath solution increased the amplitude of the outward $K^+$ current which was completely blocked by BKCa[large conductance calcium dependent potassium channels]blocker, IBX[iberiotoxin], and calcium chealator, BAPTA[l,2-bis[o-aminophenoxy]ethane-N,N,N',N'-tetraacetic acid], in whole cell mode. Conclusion : These results strongly suggest that potassium channels may play roles in papaverine-induced vascular relaxation in rat basilar artery.
Although the $Ca^{2+}-activated\;K^+\;(I_{K,Ca})$ channel is known to play an important role in the maintenance of resting membrane potential, the regulation of the channel in physiological condition is not completely understood in vascular myocytes. In this study, we investigated the role of cytoplasmic $Mg^{2+}$ on the regulation of $I_{K,Ca}$ channel in pulmonary arterial myocytes of the rabbit using the inside-out patch clamp technique. $Mg^{2+}$ increased open probability (Po), but decreased the magnitude of single channel current. $Mg^{2+}-induced$ block of unitary current showed strong voltage dependence but increase of Po by $Mg^{2+}$ was not dependent on the membrane potential. The apparent effect of $Mg^{2+}$ might, thus, depend on the proportion between opposite effects on the Po and on the conductance of $I_{K,Ca}$ channel. In low concentration of cytoplasmic $Ca^{2+},\;Mg^{2+}$ increased $I_{K,Ca}$ by mainly enhancement of Po. However, at very high concentration of cytoplasmic $Ca^{2+},$ such as pCa 5.5, $Mg^{2+}$ decreased $I_{K,Ca}$ through the inhibition of unitary current. Moreover, $Mg^{2+}$ could activate the channel even in the absence of $Ca^{2+}.\;Mg^{2+}$ might, therefore, partly contribute to the opening of $I_{K,Ca}$ channel in resting membrane potential. This phenomenon might explain why $I_{K,Ca}$ contributes to the resting membrane potential where membrane potential and concentration of free $Ca^{2+}$ are very low.
Choi, Hyun-Min;Stebbins, Charles L.;Nho, Hosung;Kim, Mi-Song;Chang, Myoung-Jei;Kim, Jong-Kyung
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.17
no.6
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pp.499-503
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2013
This study tested the hypothesis that effects of the menstrual cycle on resting blood pressure carry over to dynamic exercise. Eleven healthy females were studied during the early (EP; low estrogen, low progesterone) and late follicular (LP; high estrogen, low progesterone) menstrual phases. Stroke volume (SV), heart rate (HR), cardiac output (CO), systolic blood pressure (SBP), diastolic blood pressure (DBP), and total vascular conductance (TVC) were assessed at rest and in response to mild and moderate cycling exercise during EP and LP. During EP, compared to LP, baseline SBP ($111{\pm}1$ vs. $103{\pm}2$ mmHg), DBP ($71{\pm}2$ vs. $65{\pm}2$ mmHg) and mean arterial pressure (MAP) ($84{\pm}2$ vs. $78{\pm}1$ mmHg) were higher and TVC ($47.0{\pm}1.5$ vs. $54.9{\pm}4.2$ ml/min/mmHg) was lower (p<0.05). During exercise, absolute values of SBP (Mild: $142{\pm}4$ vs. $127{\pm}5$ mmHg; Moderate: $157{\pm}4$ vs. $144{\pm}5$ mmHg) and MAP (Mild: $100{\pm}3$ vs. $91{\pm}3$ mmHg; Moderate: $110{\pm}3$ vs. $101{\pm}3$ mmHg) were also higher, while TVC was lower (Mild: $90.9{\pm}5.1$ vs. $105.4{\pm}5.2$ ml/min/mmHg; Moderate: $105.4{\pm}5.3$ vs. $123.9{\pm}8.1$ ml/min/mmHg) during EP (p<0.05). However, exercise-induced increases in SBP, MAP and TVC at both work intensities were similar between the two menstrual phases, even though norepinephrine concentrations were higher during LP. Results indicate that blood pressure during dynamic exercise fluctuates during the menstrual cycle. It is higher during EP than LP and appears to be due to additive effects of simultaneous increases in baseline blood pressure and reductions in baseline TVC.
Intracellular free $Ca^{2+}$ contributes to regulation of various events occurring in vascular smooth muscle cells. One of these events is modulating the membrane iou currents. Single smooth muscle cells were isolated from rabbit mesenteric artery. Three kinds of $Ca^{2+}-activated\;current$ were studied with the patch clamp method. $Ca^{2+}-activated\;K^+\;current$ with a large oscillation was recorded in the depolarized potential range. The single channel conductance of this current was about 250 pS. It was abolished by replacing intracellular $K^+\;with\;Cs^+$. A $Ca^{2+}-activated$ nonselective cation current was observed in both the depolarized and hyperpolarized potential ranges. And it was blocked by replacement of extracellular $Na^+$ with N-methylglucamine (NMG) or extracellular application of $Cd^{2+}$. $Ca^{2+}-activated\;Cl^-\;current$ was revealed in the whole voltage range and was blocked by niflumic acid. These results indicate that at least three kinds of $Ca^{2+}-activated$ ionic currents exist in smooth muscle cells from rabbit superior mesenteric artery.
It has been proposed that $Ca^{2+}-activated$ K $(K_{Ca})$ channels play an essential role in vascular tone. The alterations of the properties of coronary $K_{Ca}$ channels have not been studied as a possible mechanism for impaired coronary reserve in cardiac hypertrophy. The present studies were carried out to determine the properties of coronary $K_{Ca}$ channels in normal and hypertrophied hearts. These channels were measured from rabbit coronary smooth muscle cells using a patch clamp technique. The main findings of the present study are as follows: (1) the unitary current amplitudes and the slope conductance of coronary $K_{Ca}$ channels were decreased without changes of the channel kinetics in isoproterenol-induced cardiac hypertrophy; (2) the sensitivity of coronary $K_{Ca}$ channels to the changes of intracellular concentration of $Ca^{2+}$ was reduced in isoproterenol-induced cardiac hypertrophy. From above results, we suggest for the first time that the alteration of $K_{Ca}$ channels are involved in impaired coronary reserve in isoproterenol-induced cardiac hypertrophy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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